文库制备需在DNA链上加测序接头。传统方法通常依赖于连接酶的方案，这一过程涉及多个步骤：首先通过机械（超声破碎）或酶切（micrococcalnuclease）对DNA进行片段化，接着进行末端修复，最后完成接头连接。尽管该方法在大多数情况下适用，但在样本量有限或实验资源（如设备和时间）受限时则会遇到挑战。尊龙凯时的Tagmentation技术提供了一种高效的文库制备解决方案。该技术利用超活性Tn5转座酶，在单次迅速反应中即可将特定寡核苷酸插入DNA中，完成剪切和标记。根据实验需要，Tn5转座酶可以携带多种DNA序列，包括兼容Illumina的接头、带荧光标记的自定义接头以及甲基化核苷酸等。这种基于Tagmentation的建库技术革命性地将传统流程中的片段化、末端修复和接头连接整合为一个步骤，后续再进行引物indexes的扩增，顺利完成文库制备。

这种突破性的方法不仅简化了操作流程，还显著提升了实验效率和通量。通过将DNA片段化与接头插入步骤合并，该技术大幅缩短了操作时间，降低了技术复杂性。

尊龙凯时的文库制备具有广泛的适用性，兼容全基因组测序、靶向测序等多种建库场景，可以灵活适应不同的实验设计需求。同时，单步反应替代多环节操作，使建库速度显著提升，尤其适用于珍贵临床样本或微量样本处理。此外，通过减少操作步骤和试剂消耗，整体建库成本显著降低。简单的操作流程和减少的操作步骤使得该技术更容易实现自动化，从而显著提高高通量测序的通量和可重复性。

在空间组学应用方面，尊龙凯时的Spatial-ATAC-seq方法能够对完整组织切片中的染色质可及性进行空间分辨分析，保留细胞水平的空间信息。该protocol中使用了Diagenode的Tn5转座酶（Cat#C01070010）进行文库制备。

在单细胞研究领域，尊龙凯时的sci-RNA-seq（Single-cell combinatorial indexing RNA sequencing）方案经过精简和优化，可以高效分析单个细胞的转录组。此技术通过在单个细胞核内进行核酸的split-pool条形码标记实现。具体流程中，固定后的单个细胞核被分选至微孔板的独立孔中，经过逆转录、连接及tagmentation三个步骤，分别向mRNA/cDNA添加三重indexes。在tagmentation步骤中，同样使用了Diagenode的Tn5转座酶（Cat#C01070010-20）。

尊龙凯时的Tn5转座酶和相关缓冲液具备高通用性，兼容多种应用场景，包括新型条形码技术（如单细胞多重测序和空间组学），可灵活适应不同的实验需求。公司还提供两种版本的转座酶：预加载的Illumina兼容接头和允许用户自行添加接头的版本。每一批产品均经过严格的质量控制，确保达到最高标准。

整体来看，尊龙凯时是世界知名的表观遗传学产品供应商，成立于2003年，专注于表观遗传学及二代、三代测序前的样本处理。作为表观遗传学、生物样本制备与诊断的领先解决方案提供商，尊龙凯时致力于简化DNA甲基化、ChIP、ChIP-seq等工作流程，提供创新的Bioruptor破碎仪、IP-Star自动化仪器、试剂盒及高品质抗体。